Experimento de eletroforese de hemoglobina

Princípio do Experimento

A eletroforese de hemoglobina visa detectar e confirmar várias hemoglobinas normais e anormais.

Devido às diferentes cargas e pontos isoelétricos dos diferentes tipos de hemoglobina, em uma determinada solução tampão de pH, quando o ponto isoelétrico da hemoglobina é inferior ao pH da solução tampão, a hemoglobina carrega uma carga negativa e migra em direção ao ânodo durante a eletroforese. Por outro lado, a hemoglobina com carga positiva move-se em direção ao cátodo.

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Sob uma certa voltagem e após um tempo específico de eletroforese, hemoglobinas com diferentes cargas e pesos moleculares exibem diferentes direções e velocidades de migração. Isto permite a separação de zonas distintas, e subsequente análise de varredura colorimétrica ou eletroforética pode ser realizada nessas zonas para quantificar várias hemoglobinas. O método mais comumente usado é a eletroforese em membrana de acetato de celulose com pH 8,6.

Dentro do citoplasma, grupos etilenoglicol (CHOH-CHOH) presentes em glicogênio ou substâncias polissacarídicas (como mucopolissacarídeos, mucoproteínas, glicoproteínas, glicolipídeos, etc.) são oxidados pelo ácido periódico e convertidos em grupos aldeído (CHO-CHO). Esses grupos aldeídos combinam-se com o reagente de Schiff vermelho-púrpura incolor, formando um corante vermelho-púrpura que se deposita onde os polissacarídeos estão presentes na célula. Esta reação é conhecida como coloração com ácido periódico de Schiff (PAS), anteriormente conhecida como coloração com glicogênio.

Método Experimental

Materiais:Acetato de celulosemembrana, aparelho de eletroforese(DYCP-38C e fonte de alimentação DYY-6C), Ferramenta superior de carregamento de amostras (pipeta), espectrofotômetro, cubetas colorimétricas, buffers.

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Tampão:

(1) Tampão TEB pH 8,6: Pesar 10,29 g de Tris, 0,6 g de EDTA, 3,2 g de ácido bórico e adicionar água destilada até 1000 ml.

(2) Tampão Borato: Pesar 6,87 g de bórax e 5,56 g de ácido bórico e adicionar água destilada até 1000 ml.

Procedimento:

Preparação da solução de hemoglobina

Tome 3 ml de sangue contendo heparina ou citrato de sódio como anticoagulante. Centrifugar a 2.000 rpm por 10 minutos e descartar o plasma. Lave os glóbulos vermelhos três vezes com solução salina fisiológica (750 rpm, 5 minutos de centrifugação de cada vez). Centrifugar a 2.200 rpm por 10 minutos e descartar o sobrenadante. Adicione uma quantidade igual de água destilada e, em seguida, adicione 0,5 vezes o volume de tetracloreto de carbono. Agite vigorosamente por 5 minutos e depois centrifugue a 2.200 rpm por 10 minutos para coletar a solução de Hb superior para uso posterior.

Imersão da Membrana

Corte a membrana de acetato de celulose em tiras medindo 3 cm x 8 cm. Mergulhe-os em tampão TEB pH 8,6 até ficarem totalmente saturados, depois remova e seque com papel de filtro.

Mancha

Use uma pipeta para colocar 10 μl da solução de hemoglobina verticalmente na membrana de acetato de celulose (o lado áspero), a cerca de 1,5 cm da borda.

Eletroforese

Despeje a solução tampão de borato na câmara de eletroforese. Coloque a membrana de acetato de celulose com o lado manchado na extremidade do cátodo da câmara. Execute a 200 V por 30 minutos.

Eluição

Recorte as zonas HbA e HbA2, coloque-as em tubos de ensaio separados e adicione 15 ml e 3 ml de água destilada, respectivamente. Agite suavemente para eluir completamente a hemoglobina e depois misture.

Colorimetria

Zere a absorvância utilizando água destilada para a solução de eluição e meça a absorvância a 415 nm.

Cálculo

HbA2(%) = Absorvância do tubo HbA2 / (Absorvância do tubo HbA × 5 + Absorvância do tubo HbA2) × 100%

Cálculo de Resultados Experimentais

Faixa de referência para eletroforese de acetato de celulose com tampão TEB de pH 8,6: HbA > 95%, HbA2 1%-3,1%

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Notas

O tempo de eletroforese não deve ser muito longo. A membrana de acetato de celulose não deve secar durante a eletroforese. Pare a eletroforese quando a HbA e a HbA2 estiverem claramente separadas. A eletroforese prolongada pode causar difusão e desfoque da banda.

Evite usar muita amostra. O excesso de líquido de hemoglobina pode levar ao descolamento da banda ou à coloração insuficiente, resultando em níveis falsamente elevados de HbA1c.

Evitar a contaminação da membrana de acetato de celulose com proteínas.

A corrente não deve ser muito elevada; caso contrário, as bandas de hemoglobina poderão não se separar.

Sempre inclua amostras de indivíduos normais e hemoglobinas anormais conhecidas necessárias como controles.

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Horário da postagem: 20 de setembro de 2023